Влияние имитированной невесомости (клиностатирования) на фотосинтетический аппарат растений ячменя (HORDEUM VULGARE L.)
Рубрика:
| Воловик, ОГ, Сытнык, СК, Топчий, НН |
| Косм. наука технол. 2004, 10 ;(5-6):215-217 |
| https://doi.org/10.15407/knit2004.05.215 |
| Язык публикации: Русский |
Аннотация: С использованием ДДС-Na-электрофореза в ПААГ, а также спектрофотометрических и полярографических методов проведено исследование влияния имитированной микрогравитации на организацию и функционирование фотосинтезирующих органелл - хлоропластов, выделенных из растений ячменя. Показано, что в условиях клиностатирования увеличивается относительное содержание мономерных форм светособирающего комплекса фотосистемы II (LHCII) за счет уменьшения олигомерных форм этого комплекса, а также уменьшается доля целостного комплекса фотосистемы I (ФСI). Относительное содержание суммы комплексов ФСИ, а также комплекса фотосистемы II (ФСII) в клиностатированных растениях также уменьшается. Клиностатирование вызвало уменьшение активности ФСI, ФСII и полного электронного транспорта, причем степень уменьшения зависит от освещенности при выращивании растений. Синтез АТФ, соединенный с циклическим, псевдоциклическим и линейным транспортом электронов, ингибировался в условиях имитированной невесомости.
|
References:
1. Volovik O. I., Manuilskaya S. V., et al. Phosphorylation of light-harvesting complex proteins and electron transport in photosystem 1 and 2. Fiziol. rastenij, 43 (6), 864—869 (1986) [in Russian]. 2. Kordyum E. L., Sytnik K. M., Belyavskaya N. A., et al. Modern Problems of Cellular Phytobiology in Outer Space, 293 p. (Nauka, Moscow, 1994) [in Russian]. 3. Anderson J. M. P-700 content and polypeptide profile of chlorophyll-protein complexes of spinach and barley thylakoids. Biochim. Biophys. Acta, 591, 113—126 (1980). 4. Arnon D. I. Copper enzymes in isolated chloroplasts. Polyphenol oxidase in Beta vulgaris. Plant Physiology, 24, 1 — 15 (1949). 5. Garab G., Cseh Z., et al. Light induced trimer to monomer transition in the main light-harvesting antenna complex of plants: thermooptic mechanism. Biochemistry, 41, 15121 — 15129 (2002). 6. Tripathy B. C., Brown C. S., et al. Growth and photosynthetic responses of wheat plants grown in space. Plant Physiology, 110, 801—806 (1996). 7. Volovik O. I., Kordyum E. L., Guikema J. A. Characteristics of photosynthetic apparatus under conditions of spaceflight. J. Gravit. Physiol., 6 (1), 127—128 (1999).