Активация пероксидного окисления липидов как один из механизмов перестроек в функционировании клеток и тканей растений в условиях микрогравитации
Рубрика:
| Бараненко, ВВ |
| Косм. наука технол. 2007, 13 ;(2):075-079 |
| https://doi.org/10.15407/knit2007.02.075 |
| Язык публикации: русский |
Аннотация: Активация пероксидноиго окисления липидов (ПОЛ) является универсальным механизмом повреждения клеточных мембран. Предполагается, что и в условиях микрогравитации этот процесс будет действовать во время перестройки тканей растений. Изучался перебег ПОЛ в листьях и хлоропластах гороха, а также образования активных форм кислорода, инициаторов ПОЛ, в условиях 7- и 14-суточного клиностатирования (2 об/мин). При этом отмечено усиленное образование АФК и увеличение интенсивности ПОЛ, особенно при 14-суточном клиностатированиии. Выявлено увеличение содержания ненасыщенных жирных кислот на 7-е сутки и незначительное уменьшение (~ 7%) – на 14-е. Скорость транспорта электронов в хлоропластах уменьшилась в обеих фотосистемах, особенно в первой на 14-е сутки.
|
| Ключевые слова: клеточные мембраны, микрогравитация, пероксидное окисление липидов |
References:
1. Альбертс Б., Брей Д., Льюис Дж. и др. Молекулярная биология клетки: Пер. с англ. — М.: Мир, 1994.— Т. 1.—415 с.
2. Мерзляк М. Н. Активированный кислород и окислительные процессы в мембранах растительной клетки // Итоги науки и техники. Сер. физиология растений.— 1989.—6.—167 с.
3. Мерзляк М. Н, Погосян С. И. Фотодеструкция пигментов и липидов в изолированных хлоропластах // Биол. науки.—1986.—№ 3.—С. 8—20.
4. Чиркова Т. В., Новицкая Л. О., Блохина О. Б. Пере-кисное окисление липидов и активность антиоксидант-ных систем при аноксии у растений с разной устойчивостью к недостатку кислорода // Физиол. растений.— 1998.—45, № 1.—С. 65—73.
5. Asada К. The water-water cycle in chloroplasts: scavenging of active oxygen's and dissipation of excess photons // Ann. Rev. Plant Physiol. Plant Moll. Biol.—1999.—50.— P. 601—639.
6. Blokhina О. В., Fagerstedt K. V., Chirkova T. V. Relationships between lipid peroxidation and anoxia tolerance in a range of species during post-anoxic reaeration // Physiol. Plantarum.—1999.—105, N 4.—P. 625—632.
7. Jiao S., Emmanuel H., Guikema J. A. High light stress inducing photoinhibition and protein degradation of photo-system I in Brassica rapa II Plant Sci.—2004.—167, N 4.—P. 733—741.
8. Henmi Т., Miyao M., Yamamoto Y. Release and reactive-oxygen-mediated damage of the oxygen-evolving complex subunits of PSII during photoinhibition // Plant Cell Physiol.—2004.—45, N 2.—P. 243—250.
9. Kordyum E. L. Biology of plant cell in microgravity and under clinostating // Intern. Rev. Cytology.—1997.— 171.—P. 1—77.
10. Liu X., Huang B. Heat stress injury in relation to membrane lipid peroxidation in creeping bentgrass // Crop Science.—2000.—40.—P. 503—510.
11. Navari-Izzo F., Pinzino C, Quartacci M. F., Sgherri C. L. Superoxide and hydroxyl radical generation and superoxide dismutase in PSII membrane fragments from wheat // Free Radical Res.—1999.—31.—P. 3—9.
12. Yamamoto Y. Quality control of photosystem II // Plant and Cell Physiology.—2001.—42, N 2.—P. 121 — 128.